bronkoalveolär sköljning (BAL)

Bronkoalveolär sköljning (BAL) utförs genom fiberoptisk bronkoskopi på lungsegmentet eller undersegmentet av de nedre bronchierna, steriliseras upprepade gånger och utvinns med steril saltlösning och underkastades en serie tester och analyser för att erhålla egenskaperna hos lägre luftvägsskador. Egenskaperna och aktivitetsnivån hjälper till att fastställa en diagnos. Grundläggande information Specialkategori: Andningsundersökningskategori: Andra inspektioner Tillämpligt kön: om män och kvinnor tillämpar fasta: fasta Tips: Samarbeta aktivt med läkaren under undersökningen. Normalt värde Normal. Klinisk betydelse indikationer: Lunginfektioner, särskilt immunopati, patogen diagnos av immunbrist lunginfektioner, cytologisk diagnos av diffusa och perifera lungtumörer, interstitiell lungsjukdom såsom sarkoidos, idiopatisk lungstroma Diagnos, behandling, effekt och prognos för fibros, exogen allergisk alveolit, alveolär proteinos, kollagen vaskulär med lungfibros, etc. En serie tekniker för cytologi, biokemi, enzymologi och immunologi av den utvunna vätskan genom upprepade tekniker för diarré och återhämtning av steril saltlösning genom fiberoptisk bronkoskopi vid nivån av lunga eller sub-lungsegment under bronchis. Och analys. 1. Hel lungsköljning för behandling av alveolär proteinos, silikos, alveolär mikrolitiasis, astmastatus, etc. 2. Lungesköljning används huvudsakligen för diagnos av diffus interstitiell lungfibros, asbestos och Pneumocystis carinii lunginflammation och är också av stort värde vid diagnosen diffus alveolär karcinom. försiktighetsåtgärder 1, strikt kontroll av indikationer, äldre, kroppssvikt patienter bör övervakas med elektrokardiogram och perkutan syre mättnad i blodet. Intraoperativ administrering av nasal katetersyre eller högfrekvent ventilation för syre. 2, strikt aseptisk operation under operationen för att förhindra sekundär infektion. 3, enligt kraven för regelbunden drift, bör kvalificerad sköljvätska nå den specificerade återvinningen, inget blandat blod (röda blodkroppar <10%), bör inte blandas med ett stort antal epitelceller (<3%). 4. Skicka testet så snart som möjligt efter att du har fått sköljvätskan. 5, efter uppkomsten av feber, blödning, lunginfektion, bronkospasm och andra komplikationer, motsvarande behandling. Inspektionsprocess Kontrollera funktionen 1. Fasta 3-4 timmar före operationen. 30 minuter före operationen, intramuskulär injektion av diazepam (diazepam) 10 mg och atropin 0,5 mg. 2, 2% lidokain nässlemhinna, lokal luftvägsslemhinnanestesi. 3, fiberoptisk bronkoskopi genom näshåligheten insatt i luftröret, inbäddat i den högra mitten av loben eller vänster lungtung bronkial öppning (lokala lungskador bör väljas motsvarande bronkoalveolära segment), efter injektion av 2% lidokain 2-3 ml lokalbedövning, med 50 ml-sprutan injicerades med fysiologisk saltlösning med 37 ° C i flera portioner, varje gång 25-50 ml total mängd 100-300 ml, och omedelbart efter injektionen sugs den av vakuumsugningsanordningen och återvanns i silikonsköljvätskeuppsamlingsflaskan. I allmänhet bör mängden utvunnad vätska vara 40% -60% av mängden av den injicerade vätskan. 4. Den utvunna vätskan filtreras med steril gasbind med dubbelskikt för att avlägsna slemet. Den totala mängden återvunnen vätska registreras, placeras i en kiselhaltig behållare, placeras i isvatten (-4 ° C) och skickas till inspektionsrummet. Bevattningen bör utföras inom 2-3 timmar. Lotionen inspekteras och analyseras. Bronchoalveolar lavagecytologi (1) Totalt antal och klassificering av BALF-celler 1 Ovan nämnda utvinningssköljningslösning placerades i ett plastcentrifugrör vid 1200 r / min, centrifugerades vid 4 ° C under 10 minuter, och supernatanten (stamlösning eller 10 gånger koncentrerad) lagrades vid -70 ° C för användning som en löslig komponent. 2 Cellfraktionen som fälldes ut genom centrifugering tvättades två gånger med Hanks lösning (utan Ca2 +, Mg2 +) under samma betingelser under 5 minuter varje gång. Kasta supernatanten och tillsätt 3 till 5 ml Hank-lösning för att framställa en cellsuspension. Cellulite kan också användas för att minska cellförlusten. 3 Det totala antalet celler i BALF räknades sedan på en modifierad Neubauer-räknare, vanligtvis uttryckt som 1 x 106 / ml. Om antalet celler är för högt, späd ut med Hanks lösning, justera antalet celler till 5 × 106 / ml och sänk samtidigt provröret i isbitar för användning. 4-cellssortering, med hjälp av en cytospin-smutsanordning, tillsättning av 100 ul av en reservcellsuspension (cellkoncentration av 5 × 106 celler / ml), centrifugering vid 1200 r / min under 10 minuter vid 4 ° C, ett visst antal BALF-celler genom centrifugering Spridas direkt på en saltrutschbana. De nedladdade objektglasen torkades omedelbart med kall luft, fixerades i absolut etanol under 30 minuter och färgades, vanligtvis med Wright- eller HE-färgning. 5 200 celler räknades under ett 40-faldigt optiskt mikroskop och cellsortering utfördes. (2) Detektion av T-lymfocytundergrupper i BALF 1 Med användning av den indirekta immunofluorescensmetoden gjordes BALF-cellfraktionen som erhållits ovan till en cellsuspension med användning av 3 till 5 ml 10% kalvserum RPMI1640-medium. 2 Häll cellsuspensionen i en skål och inkubera i en 5% CO237 ° C inkubator under 2 timmar för vidhäftning för att avlägsna alveolära makrofager. 3 Cellsuspensionen togs ut och centrifugerades sedan en gång med Hank-lösning, och 20 till 100 ul av supernatanten kasserades. I cellsuspensionen efter vidhäftande behandling reducerades alveolära makrofager signifikant och lymfocyterna ökades relativt. 4 Dispenser den vidhäftande cellsuspensionen i 3 små koniska centrifugrör, varje rör 20 ~ 30μl, tillsätt 20 ~ 40μl monoklonala antikroppar CD3, CD4 och CD8 till provet med en mikroprover, blanda väl Placera i kylskåp vid 4 ° C i 1 till 2 timmar. 5 Ta ut provet, centrifugera först med Hank-vätska i två gånger, centrifugera vid 12000r / min under 20s, tillsätt sedan 20-40μl get-fluorescerande antikropp för mus och lägg den i kylskåpet under 30 min. 6 Ta provet och använd Hank-lösningen för att centrifugera två gånger med samma hastighet och tid, kasta supernatanten och lämna 20 μl och blanda väl. Ta 1 droppe på objektglaset och täck sliden. Ett antal av 200 lymfocyter räknades under ett fluorescensmikroskop och den positiva hastigheten för celler markerade med fluorescens beräknades. Inte lämplig för publiken Kardiopulmonär dysfunktion är allvarlig, syrepartialtrycket är lägre än 6,67 kPa, nyligen stor hemoptys, aktiv tuberkulos utan behandling. 1. Alla kontraindikationer för bronkoskopi är kontraindikationer för bronkoalveolärt lavage. 2. Hög mental stress kan inte kombineras med avslutning av fiberoptiska bronkoskopipatienter. 3. Patienter med svår ventilations- och ventilationsdysfunktion, PaO2 <6,67 kPa (50 mmHg) eller PaO2 <9,33 kPa (70 mmHg) under inandning av syre. 4. Patienter med koronar hjärtsjukdom, hypertoni, arytmi och ofta angina pectoris. 5. Aorta aneurysm och esophageal varicer riskerar att brista. 6. Patienter med nyligen feber, hemoptys och astmaattacker. Biverkningar och risker Det kan vara komplikationer som feber, blödning, lunginfektion och bronkospasm.

Materialet på denna webbplats är avsett att vara allmänt informativt bruk och är inte avsett att utgöra medicinsk rådgivning, sannolik diagnos eller rekommenderade behandlingar.