Vibrio cholerae detectie

De conventionele methode voor Vibrio cholerae-inspectie is directe smeer, vlekkeninspectie en dynamische observatietemproef. Klinische analyse van positieve resultaten kan worden gebruikt als referentie voor snelle diagnose. Gramkleuring toonde typische Gram-negatieve Vibrio. Het donkere veldonderzoek van de hangende druppels toont een shuttle-achtige live beweging. Positieve immunologische remtest heeft een belangrijke referentiewaarde. De bovenstaande resultaten kunnen alleen worden gebruikt voor de initiële diagnose en de uiteindelijke diagnose moet nog steeds worden gebaseerd op de kweekresultaten. Basis informatie Specialistenclassificatie: Infectieziekte-inspectie en classificatie: pathogene micro-organismen inspectie Toepasselijk geslacht: of mannen en vrouwen nuchter zijn: niet vasten Analyse resultaten: Hieronder normaal: Normale waarde: geen Boven normaal: negatief: Vibrio cholerae werd niet gedetecteerd. positief: Prompt voor Vibrio cholerae-infectie. Tips: Als u fecaal occult bloed via een chemische methode moet detecteren, vermijd dan drie dagen vóór het verzamelen rood vlees, lever en spinazie, kool, broccoli en ander voedsel om vals-positieve resultaten te voorkomen. Normale waarde Vibrio cholerae werd niet gedetecteerd. Klinische betekenis Abnormale resultaten: 1. Klinische analyse van positieve resultaten Microscopie kan worden gebruikt als referentie voor snelle diagnose. Gramkleuring toonde typische Gram-negatieve Vibrio. Het donkere veldonderzoek van de hangende druppels toont een shuttle-achtige live beweging. Positieve immunologische remtest heeft een belangrijke referentiewaarde. De bovenstaande resultaten kunnen alleen worden gebruikt voor de initiële diagnose en de uiteindelijke diagnose moet nog steeds worden gebaseerd op de kweekresultaten. 2, positief in cholera. Mensen die getest moeten worden: Frequente acute diarree, braken en andere vermoedelijke cholerapatiënten. Positieve resultaten kunnen ziekten zijn: cholera, voorzorgsmaatregelen voor paracholera Bij het controleren van: 1. Vermijd het graven van het deel van de toileturine en kraanwater tijdens het verzamelen; plaats de ontlasting niet rechtstreeks op toiletpapier of papieren handdoek. 2. Gebruik geen wattenstaafjes om te graven om interferentie met de testresultaten te voorkomen. 3. Verzamel niet te veel ontlasting om te voorkomen dat er voldoende exemplaren voor inspectie zijn. 4. Als u fecaal occult bloed met een chemische methode moet detecteren, vermijd dan drie dagen vóór het verzamelen rood vlees, lever en spinazie, kool, broccoli en ander voedsel om vals-positieve resultaten te voorkomen. 5. Als u de immunologische methode gebruikt om fecaal occult bloed te detecteren, hoeft u het soort dieet niet te beperken. 6. Omdat zuigelingen en jonge kinderen niet gemakkelijk in staat zijn om in één keer voldoende monsters te krijgen, moet u de monsters, als ze afzonderlijk moeten worden verzameld, tijdelijk in de koelkast bewaren om bacteriegroei te voorkomen. Niet geschikt voor mensen: Mensen zonder cholera-symptomen. Inspectie proces 1. Verrijking Een monster van 25 g werd gewogen en toegevoegd aan een pot die 225 ml alkalisch peptonwater (APW) bevatte. Vaste monsters moeten worden gebroken met een homogenisator van 9000r / min tot 10000r / min of volledig worden versnipperd met een schaar. (36 ± 1) ° C cultuur gedurende 6h ~ 8h en 16h ~ 24h. Voor oestermonsters moet een ander monster worden bereid en in APW worden geplaatst, gekweekt bij 42 ° C gedurende 6 uur ~ 8 uur en 16 uur ~ 24 uur. 2, scheiding De oppervlaktegroei van het verrijkingsmedium van 6 uur - 8 uur en 16 uur - 24 uur werd geïnoculeerd met 3 mm - 5 mm, en ten minste één TCBS-agarplaat werd uiteindelijk uitgestreken en gedurende 18 - 24 uur gekweekt bij (36 ± 1) ° C. Op TCBS-agar zijn typische Vibrio cholerae-kolonies groot, glad, geel, licht plat, met ondoorzichtige centra en doorschijnende randen. 3. Eerste identificatie (1) Twee tot vijf verdachte kolonies op TCBS-agarplaten werden opgepikt met een inoculerende lus, uitgestreken op T1N1-agarplaten en gekweekt bij (36 ± 1) ° C gedurende 12 uur tot 18 uur. (2) De T1N1-agar-oppervlaktekweek werd opgenomen met een steriel wit filterpapier en een oxidase-test werd uitgevoerd door een oxidasereagens toe te voegen. (3) Een steriele lus-oxidase-positieve cultuur werd aangebracht op een druppel van 0,5% natriumdeoxycholaatreagens om een kleverige draadtest uit te voeren. (4) De culturen waarin de oxidase en de plakkerige zijde-test positief waren door inoculatie werden geïnoculeerd, TSI, KIA en AGS werden geïnoculeerd en de onderste laag werd doorboord en de helling werd gekrast. (5) Inoculeer T1N0- en T1N3-bouillon met dezelfde kweek als de bovengenoemde inoculatienaald. (6) TSI-, KIA-, AGS-, T1N0- en T1N3-bouillon werden gedurende 18 - 24 uur bij (36 ± 1) ° C gekweekt. Niet geschikt voor het publiek Niet geschikt voor mensen: mensen zonder cholerasymptomen. Bijwerkingen en risico's Over het algemeen geen complicaties en schade.

Het materiaal op deze site is bedoeld voor algemeen informatief gebruik en is niet bedoeld als medisch advies, waarschijnlijke diagnose of aanbevolen behandelingen.