혈청 요소

요소 (우레)는 포유류 단백질 이화 작용의 최종 산물입니다. 그것은 오르니 틴에 의해 간에서 합성되며 주로 신장에 의해 배설됩니다. 요소는 분자량이 작고 용해하기 쉽고 확산력이 매우 크기 때문에 뇌척수액, 혈청 삼출액, 타액 및 땀의 요소 농도는 기본적으로 동일합니다. 혈액 우레아 농도는 주로 신장 기능과 단백질 섭취 및 이화 작용에 영향을받습니다. 현재, 임상 실험실에서 우레아를 결정하기 위해 가장 일반적으로 사용되는 방법은 디 아세틸-하이드라진 방법 및 효소 커플 링 속도 방법이다. 기본 정보 전문가 분류 : 비뇨기과 검사 분류 : 혈액 검사 해당 성별 : 남성과 여성의 금식 적용 여부 : 금식 분석 결과 : 정상 이하 : 임상 실습에서 덜 일반적입니다. 주로 간 실질 손상으로 인한 생산 감소. 급성 황색 간 위축, 간경변, 독성 간염, 심한 빈혈 등. 정상 값 : 혈청 우레아 : 2.0-7.1mmol / L 정상 이상 : 1, 급성 신부전, 만성 신염, 신장 동맥 경화증, 만성 신우 신염, 신장 결핵, 신장 종양 등의 신장 질환, 경증 신장 장애, BUN은 변하지 않을 수 있습니다. 유효 네프론의 60 % ~ 70 %가 손상되면 BUN이 증가했습니다. 따라서 BUN 측정은 조기 신장 기능 장애의 지표로 사용될 수 없지만 신부전 진단, 특히 요독증 진단에 특별한 가치가 있으며 상태를 판단하고 예후를 추정 할 수 있습니다. 신부전 정도는 BUN 측정 결과에 따라 판단 할 수 있습니다. A. 신부전 보상 Ccr 감소 혈액 Cr 정상이었다. BUN은 정상이거나 약간 상승 하였다 (9mmol / L). C. uremic phase에서 Ccr 445 μmol / L, BUN> 20 mmol / L. 2, 신장 전 또는 신장 후 요인은 심한 구토, 탈수로 인한 설사, 부종, 복수, 순환 장애, 요로 결석, 전립선 비대, 종양 등과 같은 소변 출력 또는 소변 폐쇄의 현저한 감소를 유발합니다. 방해. 3, 큰 화상, 주요 수술, 상부 위장 출혈, 갑상선 기능 항진증 및 급성 전염병과 같은 신체의 과도한 단백질 분해. 현재 BUN이 증가한 반면 다른 신장 기능 검사는 일반적으로 정상이었습니다. 부정적 : 긍정적 : 알림 : 시약 컵, 샘플 컵 및 반응 컵에는 암모니아가 없어야하며 깨끗하고 산 및 알칼리 오염이 없어야합니다. 정상 값 1. 디 아세틸-히드라진 방법 2.0 내지 7.1 mmol / L. 2. 효소 커플 링 속도 방법은 2.0 내지 7.1 mmol / L이다. 임상 적 의의 1. 증가 : (1) 신부전증, 만성 신염, 신장 동맥 경화증, 만성 신우 신염, 신장 결핵, 진행성 신장 종양 등과 같은 신장 질환, 신장 기능이 약간 손상되면 BUN은 변하지 않을 수 있습니다. 유효 네프론의 60 % ~ 70 %가 손상되면 BUN이 증가했습니다. 따라서 BUN 측정은 조기 신장 기능 장애의 지표로 사용될 수 없지만 신부전 진단, 특히 요독증 진단에 특별한 가치가 있으며 상태를 판단하고 예후를 추정 할 수 있습니다. 신부전 정도는 BUN 측정 결과에 따라 판단 할 수 있습니다. A. 신부전 보상 Ccr 감소 혈액 Cr 정상이었다. BUN은 정상이거나 약간 상승합니다 (<9 mol / L). B. 신부전증 (질소 혈증 또는 요독증)의 상쇄 Ccr은 유의하게 감소 (<0.83ml / s), 혈액 Cr은 증가 (> 90mmol / L), BUN은 약간 증가 (> 9mmol / L). C. 요도에서 Ccr <0.33ml / s, 혈액 Cr> 445μmol / L, BUN> 20mmol / L. (2) 신장 전 또는 신장 후 요인은 심한 구토, 설사로 인한 탈수, 부종, 복수, 순환 부전 및 소변 계산법, 전립선 비대, 종양 등과 같은 소변 출력 또는 소변 폐쇄의 현저한 감소를 유발합니다. 도로 방해. (3) 대면 화상, 대수술, 상부 위장관 출혈, 갑상선 기능 항진증 및 급성 전염병과 같은 신체의 과도한 단백질 분해. 현재 BUN이 증가한 반면 다른 신장 기능 검사는 일반적으로 정상이었습니다. 2, 낮음 : 임상 적으로 덜 일반적입니다. 주로 간 실질 손상으로 인한 생산 감소. 급성 황색 간 위축, 간경변, 독성 간염, 심한 빈혈 등. 높은 결과는 질병 일 수 있습니다 : 요독증, 신부전 예방 조치 1, 디 아세틸-옥심 방법 : (1) 우레아는 디 아세틸-히드라진과 직접 반응 할 수 없으며, 디 아세틸-히드라진 및 강산을 첨가하는 목적은 그와 반응 할 수있는 디 아세틸을 생성하는 것이다. Fe3 + (또는 Cd2 +)의 첨가는 반응 동안 형성된 히드 록실 아민의 간섭을 제거하기위한 것이며, 티오 요소는 반응의 감도를 20 배 증가시킬 수있다. 많은 이전의 책들에서 소개 된 방법은 디 아세틸-히드라진과 티오 세미 카바 지드를 조합하는 것이다. 그러나, 둘 모두 바늘 형 황색 물질을 형성 할 수 있으며, 이는 산 시약에서 티오 요소를 사용함으로써 극복된다. (2) 산 농도는 흡광도와 양의 상관 관계가 있으므로 산 농도가 정확해야합니다. 사용 된 시험관의 직경은 끓는 물에서 가능한 한 균일해야하며, 액체 수준은 시험관의 액체 수준보다 높아야하며, 비등 시간은 시험관에 재비 등을 위해 넣어야합니다. 매번 표준 및 품질 관리를 측정하는 것이 가장 좋습니다. 우레아의 역학적 변화를 관찰 할 때, 환자는 단백질 섭취량을 일정하게 유지하고 공복시 혈액을 채취해야합니다. 시료를 즉시 분석 할 수없는 경우, 혈청 (또는 혈장)을 밀봉 된 시료 컵으로 추출하여 4 ° C에서 7 일 동안 보관할 수 있습니다. 결과가 20 mmol / L보다 큰 경우, 샘플을 10 μl로 변경하고 결과에 2를 곱합니다. (3)이 방법은 티오 세미 카바 지드 및 카드뮴 이온을 첨가하지만 발색 강도 및 발색 안정성을 어느 정도 향상 시키지만, 여전히 끓는 가열 및 발색 후에는 여전히 퇴색 (시간당 약 5 %)이 있습니다. 적시에 색상을 비교해야합니다. (4) 사용하기 전에 사용 된 20μl 샘플러를 수정해야합니다. (5) 혈장 (명확한) 요산, 크레아티닌, 아미노산 및 기타 질소 함유 물질은이 검사에 방해가되지 않으며 용혈은 높은 결과를 초래하고 황달은 낮은 결과를 초래할 수 있습니다. (6) 혈장 (명확한) 요소 함량은 식품의 단백질 함량과 밀접한 관련이 있습니다. 고단백 식단에서는 혈장 요소의 양 (명확한)을 크게 증가시킬 수 있으며, 저 단백 식단에서는 함량이 크게 감소합니다. 2. 효소 커플 링 속도 방법 : (1)이 방법의 가장 일반적인 문제는 시약의 고장 또는 반응 시스템의 오염입니다. 가장 불안정한 시약은 NADH 및 글루타메이트 탈수소 효소입니다. 분석 과정에서 혈장을 사용하는 경우, 플루오로 케미컬 화합물 또는 NH4 + 항응고제는 사용할 수 없으며, 전자는 우레아제 활성을 억제 할 수 있지만 후자는 반응에 참여할 수 있습니다. (2) 시약 블랭크 흡광도가 1.2A보다 커야하며, 그렇지 않으면 NADH가 산화됩니다. 동일한 시약 및 기기의 경우 분석 조건이 일정한 조건에서 F 값이 상대적으로 일정해야합니다. 그렇지 않으면 시약이 유효하지 않습니다. (3) 효소의 비활성화를 피하기 위해 재구성 된 시약을 흔들지 마십시오. 시약은 암모니아없이 재구성되어야합니다. 시약 컵, 샘플 컵 및 반응 컵에는 암모니아가없고 깨끗하며 산 및 알칼리 오염이 없어야하며 매번 교정하고 품질 관리 혈청으로 테스트해야합니다. 검사 과정 디 아세틸-하이드라진 방법 : 1. 테스트 튜브에는 빈 튜브 "B", 측정 튜브 "U"및 표준 튜브 "S"가 표시되어 있습니다. 2, 측정 튜브 플러스 플라즈마 (클리어) 20μl, 표준 튜브 플러스 표준 응용 솔루션 20μl, 블랭크 튜브 플러스 증류수 20μl. 3. 각각의 산성 시약 3ml 및 디 아세틸-하이드라진 시약 3ml. 4. 철저히 혼합하고 10 분 동안 끓인 후 제거하고 식힌다. 5, 520nm 파장, 비색 영점의 블랭크 튜브, 표준 튜브 및 측정 튜브 흡광도 측정. 참고 : 1. 우레아는 디 아세틸-히드라진과 직접 반응 할 수 없으며, 디 아세틸-히드라진 및 강산을 첨가하는 목적은 이에 반응 할 수있는 디 아세틸을 생성하는 것이다. Fe3 + (또는 Cd2 +)의 첨가는 반응 동안 형성된 히드 록실 아민의 간섭을 제거하기위한 것이며, 티오 요소는 반응의 감도를 20 배 증가시킬 수있다. 많은 이전의 책들에서 소개 된 방법은 디 아세틸-히드라진과 티오 세미 카바 지드를 조합하는 것이다. 그러나, 둘 모두 바늘 형 황색 물질을 형성 할 수 있으며, 이는 산 시약에서 티오 요소를 사용함으로써 극복된다. 2. 산 농도는 흡광도와 양의 상관 관계가 있으므로 산 농도가 정확해야합니다. 사용 된 시험관의 직경은 끓는 물에서 가능한 한 균일해야하며, 액체 수준은 시험관의 액체 수준보다 높아야하며, 비등 시간은 시험관에 재비 등을 위해 넣어야합니다. 매번 표준 및 품질 관리를 측정하는 것이 가장 좋습니다. 우레아의 역학적 변화를 관찰 할 때, 환자는 단백질 섭취량을 일정하게 유지하고 공복시 혈액을 채취해야합니다. 시료를 즉시 분석 할 수없는 경우, 혈청 (또는 혈장)을 밀봉 된 시료 컵으로 추출하여 4 ° C에서 7 일 동안 보관할 수 있습니다. 결과가 20 mmol / L보다 큰 경우, 샘플을 10 μl로 변경하고 결과에 2를 곱합니다. 3.이 방법은 티오 세미 카바 지드와 카드뮴 이온을 첨가하지만 발색 강도와 발색 안정성을 어느 정도 향상 시키지만 여전히 퇴색합니다 (시간당 약 5 %). 적시 색상 비교. 4. 사용하기 전에 사용 된 20μl 샘플러를 수정해야합니다. 5. 혈장 (명확한) 요산, 크레아티닌, 아미노산 및 기타 질소 성분은이 검사에 방해가되지 않으며 용혈은 높은 결과를 초래하고 황달은 낮은 결과를 초래할 수 있습니다. 6. 혈장 (명확한) 요소 함량은 식품의 단백질 함량과 밀접한 관련이 있습니다. 고단백 식단에서는 혈장 요소의 양 (명확한)을 크게 증가시킬 수 있으며, 저 단백 식단에서는 함량이 크게 감소합니다. 효소 커플 링 속도 방법 : 시약 샘플 ​​비율은 70 : 1, 37 ° C, 340nm, 지연 시간은 30 초, 판독 시간은 30 초였다. 특정 분석 조건은 키트 및 기기의 사양에 따라, 바람직하게는 매번 결정될 수있다. 참고 : 1.이 방법의 가장 일반적인 문제는 시약의 고장 또는 반응 시스템의 오염입니다. 가장 불안정한 시약은 NADH 및 글루타메이트 탈수소 효소입니다. 분석 과정에서 혈장을 사용하는 경우, 플루오로 케미컬 화합물 또는 NH4 + 항응고제는 사용할 수 없으며, 전자는 우레아제 활성을 억제 할 수 있지만 후자는 반응에 참여할 수 있습니다. 2. 시약 블랭크의 흡광도가 1.2A보다 커야합니다. 그렇지 않으면 NADH가 산화됩니다. 동일한 시약 및 기기의 경우 분석 조건이 일정한 조건에서 F 값이 상대적으로 일정해야하며 그렇지 않으면 시약이 유효하지 않습니다. 3. 효소의 비활성화를 피하기 위해 재구성 된 시약을 진동시키지 마십시오. 시약은 암모니아없이 재구성되어야합니다. 시약 컵, 샘플 컵 및 반응 컵에는 암모니아가없고 깨끗하며 산 및 알칼리 오염이 없어야하며 매번 교정하고 품질 관리 혈청으로 테스트해야합니다. 군중에게 적합하지 않음 일반적으로 금기 사항이 없습니다. 부작용 및 위험 일반적으로 금기 사항이 없습니다.

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