Serum-Harnstoff

Harnstoff (ure) ist das Endprodukt des Proteinkatabolismus bei Säugetieren. Es wird in der Leber durch Ornithin synthetisiert und hauptsächlich über die Nieren ausgeschieden. Da Harnstoff ein geringes Molekulargewicht aufweist und sich leicht auflösen lässt und die Diffusionskraft extrem hoch ist, sind die Konzentrationen von Harnstoff in der Liquor cerebrospinalis, Serosaleffusion, Speichel und Schweiß im Wesentlichen gleich. Die Blutharnstoffkonzentration wird hauptsächlich durch die Nierenfunktion, die Proteinaufnahme und den Katabolismus beeinflusst. Gegenwärtig sind die am häufigsten verwendeten Methoden zur Bestimmung von Harnstoff in klinischen Labors die Diacetyl-Hydrazin-Methode und die Enzymkopplungsratenmethode. Grundlegende Informationen Facharztklassifikation: Harnuntersuchung Klassifikation: Blutuntersuchung Anwendbares Geschlecht: ob Männer und Frauen Fasten anwenden: Fasten Analyseergebnisse: Unter dem normalen Wert: Seltener in der klinischen Praxis. Hauptsächlich aufgrund einer Schädigung des Leberparenchyms, verringerte sich die Produktion. Wie akute gelbe Leberatrophie, Leberzirrhose, toxische Hepatitis, schwere Anämie. Normalwert: Serumharnstoff: 2,0-7,1 mmol / l Überdurchschnittlich: 1, Nierenerkrankungen wie akutes Nierenversagen, chronische Nephritis, Nierenarteriosklerose, chronische Pyelonephritis, Nierentuberkulose, Nierentumor usw., leichte Nierenfunktionsstörung, BUN kann unverändert sein. Das BUN erhöhte sich, wenn 60% bis 70% des wirksamen Nephrons beschädigt waren. Daher kann die BUN-Messung nicht als Indikator für eine frühzeitige Beeinträchtigung der Nierenfunktion verwendet werden, hat jedoch einen besonderen Wert für die Diagnose von Nierenversagen, insbesondere von Urämie, und kann den Zustand beurteilen und die Prognose abschätzen. Der Grad des Nierenversagens kann anhand der BUN-Messergebnisse beurteilt werden. A. Durch Nierenversagen kompensiertes Ccr nahm ab, Blut-Cr war normal. BUN war normal oder leicht erhöht (9 mmol / l). Ccr 445 μmol / l in urämischer Phase, BUN> 20 mmol / l. 2. Prä- oder post-renale Faktoren verursachen eine signifikante Verringerung der Urinausscheidung oder des Harnverschlusses, wie z. B. schweres Erbrechen, Durchfall aufgrund von Dehydration, Ödemen, Aszites, Kreislaufversagen sowie Harnwegssteinen, Prostatahypertrophie, Tumoren usw. Behinderung. 3, übermäßige Proteinzersetzung im Körper, wie großflächige Verbrennungen, größere Operationen, Blutungen im oberen Magen-Darm-Trakt, Schilddrüsenüberfunktion und akute Infektionskrankheiten. Zu diesem Zeitpunkt stieg der BUN an, während andere Nierenfunktionstests im Allgemeinen normal waren. Negativ: Positiv: Erinnerung: Der Reagenzienbecher, der Probenbecher und der Reaktionsbecher sollten frei von Ammoniak, sauber und frei von sauren und alkalischen Verunreinigungen sein. Normalwert 1. Diacetylhydrazin-Methode 2,0 bis 7,1 mmol / l. 2. Die Enzymkopplungsrate beträgt 2,0 bis 7,1 mmol / l. Klinische Bedeutung 1. Erhöhen Sie: (1) Nierenerkrankungen wie akutes Nierenversagen, chronische Nephritis, Nierenarteriosklerose, chronische Pyelonephritis, Nierentuberkulose, fortgeschrittene Nierentumoren usw. können bei leicht eingeschränkter Nierenfunktion unverändert bleiben. Das BUN erhöhte sich, wenn 60% bis 70% des wirksamen Nephrons beschädigt waren. Daher kann die BUN-Messung nicht als Indikator für eine frühzeitige Beeinträchtigung der Nierenfunktion verwendet werden, hat jedoch einen besonderen Wert für die Diagnose von Nierenversagen, insbesondere von Urämie, und kann den Zustand beurteilen und die Prognose abschätzen. Der Grad des Nierenversagens kann anhand der BUN-Messergebnisse beurteilt werden. A. Durch Nierenversagen kompensiertes Ccr nahm ab, Blut-Cr war normal. BUN ist normal oder leicht erhöht (<9 mol / l). B. Dekompensation von Nierenversagen (Stickstoff- oder Urämie) Ccr nahm signifikant ab (<0,83 ml / s), Blut-Cr stieg an (> 90 mmol / l), BUN nahm mäßig zu (> 9 mmol / s) L). C. Ccr <0,33 ml / s in urämischer Phase, Blut Cr> 445 & mgr; mol / l, BUN> 20 mmol / l. (2) Prä- oder post-renale Faktoren verursachen eine signifikante Verringerung der Urinausscheidung oder des Harnverschlusses, wie z. B. schweres Erbrechen, Austrocknung aufgrund von Durchfall, Ödemen, Aszites, Kreislaufversagen und Harnsteinen, Prostatahypertrophie, Tumoren usw. Verkehrsbehinderung. (3) Übermäßiger Proteinabbau im Körper, z. B. großflächige Verbrennungen, größere chirurgische Eingriffe, Blutungen im oberen Gastrointestinaltrakt, Hyperthyreose und akute Infektionskrankheiten. Zu diesem Zeitpunkt stieg der BUN an, während andere Nierenfunktionstests im Allgemeinen normal waren. 2, niedriger: klinisch seltener. Hauptsächlich aufgrund einer Schädigung des Leberparenchyms, verringerte sich die Produktion. Wie akute gelbe Leberatrophie, Leberzirrhose, toxische Hepatitis, schwere Anämie. Hohe Ergebnisse können Krankheiten sein: Urämie, Vorsichtsmaßnahmen gegen Nierenversagen 1, Diacetyloxim-Methode: (1) Harnstoff kann nicht direkt mit Diacetylhydrazin reagieren, und der Zweck der Zugabe von Diacetylhydrazin und starker Säure besteht darin, Diacetyl zu erzeugen, das damit umgesetzt werden kann. Durch die Zugabe von Fe3 + (oder Cd2 +) wird die Interferenz des während der Reaktion gebildeten Hydroxylamins beseitigt, und der Thioharnstoff kann die Empfindlichkeit der Reaktion um das 20-fache erhöhen. Das in vielen früheren Büchern eingeführte Verfahren besteht darin, Diacetylhydrazin mit Thiosemicarbazid zu kombinieren. Beide können jedoch eine nadelartige gelbe Substanz bilden, die durch die Verwendung von Thioharnstoff in einem sauren Reagens überwunden wird. (2) Die Säurekonzentration ist positiv mit der Extinktion korreliert, daher sollte die Säurekonzentration genau sein. Der Durchmesser des verwendeten Reagenzglases sollte im kochenden Wasser so gleichmäßig wie möglich sein, der Flüssigkeitsstand sollte über dem Flüssigkeitsstand im Reagenzglas liegen und die Kochzeit sollte zum erneuten Kochen in das Reagenzglas gegeben werden. Es ist am besten, den Standard und die Qualitätskontrolle jedes Mal zu messen. Bei der Beobachtung der dynamischen Veränderungen des Harnstoffs sollte die Proteinaufnahme der Patienten konstant gehalten werden, und das Blut sollte auf nüchternen Magen entnommen werden. Wenn die Probe nicht sofort analysiert werden kann, kann das Serum (oder Plasma) in einen versiegelten Probenbecher extrahiert und 7 Tage bei 4 ° C gelagert werden. Ist das Ergebnis größer als 20 mmol / L, wird die Probe auf 10 μl geändert und das Ergebnis mit 2 multipliziert. (3) Obwohl bei diesem Verfahren Thiosemicarbazid- und Cadmiumionen zugesetzt werden, werden die Farbentwicklungsintensität und die Farbstabilität bis zu einem gewissen Grad verbessert, es tritt jedoch immer noch ein Ausbleichen auf (etwa 5% pro Stunde). Sollte zeitnaher Farbvergleich sein. (4) Der verwendete 20μl-Probenehmer muss vor dem Gebrauch korrigiert werden. (5) Plasma (klare) Harnsäure, Kreatinin, Aminosäuren und andere stickstoffhaltige Substanzen beeinträchtigen diesen Test nicht. Eine Hämolyse kann zu hohen Ergebnissen und ein Ikterus zu niedrigen Ergebnissen führen. (6) Der Plasma-Harnstoffgehalt (klar) steht in engem Zusammenhang mit dem Proteingehalt des Lebensmittels. Bei proteinreichen Diäten kann die Menge an Harnstoff im Plasma (klar) signifikant erhöht werden, während bei proteinarmen Diäten der Gehalt signifikant verringert wird. 2. Methode der Enzymkopplungsrate: (1) Das häufigste Problem bei dieser Methode ist das Versagen des Reagens oder die Kontamination des Reaktionssystems. Die instabilsten Reagenzien sind NADH und Glutamatdehydrogenase. Bei der Analyse sollten folgende Aspekte beachtet werden: Wenn Plasma verwendet wird, können keine fluorchemischen Verbindungen oder NH4 + -Antikoagulanzien verwendet werden, da erstere die Urease-Aktivität hemmen und letztere an der Reaktion teilnehmen können. (2) Die Extinktion des Reagenzienblindwerts sollte größer als 1,2 A sein, da sonst das NADH oxidiert wird. Für dieselben Reagenzien und Instrumente sollte der F-Wert unter der Bedingung relativ konstant sein, dass die Analysebedingungen konstant sind, da sonst das Reagenz ungültig wird. (3) Schütteln Sie das rekonstituierte Reagenz nicht, um eine Deaktivierung des Enzyms zu vermeiden. Das Reagenz muss ohne Ammoniak rekonstituiert werden. Der Reagenzienbecher, der Probenbecher und der Reaktionsbecher sollten frei von Ammoniak, sauber und frei von Säure- und Alkaliverunreinigungen sein, jedes Mal kalibriert und mit Qualitätskontrollserum getestet werden. Inspektionsprozess Diacetylhydrazin-Methode: 1. Das Reagenzglas ist mit einem Blindröhrchen "B", einem Messröhrchen "U" und einem Standardröhrchen "S" gekennzeichnet. 2 im Messröhrchen plus Plasma (klar) 20μl, Standardröhrchen plus Standardapplikationslösung 20μl, Blindröhrchen plus destilliertes Wasser 20μl. 3. 3 ml jedes sauren Reagens und 3 ml Diacetylhydrazin-Reagens. 4. Gut mischen, 10 Minuten kochen lassen, herausnehmen und abkühlen lassen. 5, 520nm Wellenlänge, Blindröhre auf null kolorimetrisch, Standardröhre ablesen und Röhrenabsorption messen. Hinweis: 1. Harnstoff kann nicht direkt mit Diacetylhydrazin reagieren. Der Zweck der Zugabe von Diacetylhydrazin und starker Säure besteht darin, Diacetyl zu erzeugen, das mit ihm reagieren kann. Durch die Zugabe von Fe3 + (oder Cd2 +) wird die Interferenz des während der Reaktion gebildeten Hydroxylamins beseitigt, und der Thioharnstoff kann die Empfindlichkeit der Reaktion um das 20-fache erhöhen. Das in vielen früheren Büchern eingeführte Verfahren besteht darin, Diacetylhydrazin mit Thiosemicarbazid zu kombinieren. Beide können jedoch eine nadelartige gelbe Substanz bilden, die durch die Verwendung von Thioharnstoff in einem sauren Reagens überwunden wird. 2. Die Säurekonzentration ist positiv mit der Extinktion korreliert, daher sollte die Säurekonzentration genau sein. Der Durchmesser des verwendeten Reagenzglases sollte im kochenden Wasser so gleichmäßig wie möglich sein, der Flüssigkeitsstand sollte über dem Flüssigkeitsstand im Reagenzglas liegen und die Kochzeit sollte zum erneuten Kochen in das Reagenzglas gegeben werden. Es ist am besten, den Standard und die Qualitätskontrolle jedes Mal zu messen. Bei der Beobachtung der dynamischen Veränderungen des Harnstoffs sollte die Proteinaufnahme der Patienten konstant gehalten werden, und das Blut sollte auf nüchternen Magen entnommen werden. Wenn die Probe nicht sofort analysiert werden kann, kann das Serum (oder Plasma) in einen versiegelten Probenbecher extrahiert und 7 Tage bei 4 ° C gelagert werden. Ist das Ergebnis größer als 20 mmol / L, wird die Probe auf 10 μl geändert und das Ergebnis mit 2 multipliziert. 3. Obwohl dieses Verfahren Thiosemicarbazid- und Cadmiumionen hinzufügt, verbessert es in gewissem Maße die Farbentwicklungsintensität und Farbstabilität, es tritt jedoch immer noch ein Verblassen auf (etwa 5% pro Stunde). Rechtzeitiger Vergleich der Farben 4. Der verwendete 20μl-Probenehmer muss vor dem Gebrauch korrigiert werden. 5. Plasma (klare) Harnsäure, Kreatinin, Aminosäuren und andere stickstoffhaltige Substanzen beeinträchtigen diesen Test nicht. Eine Hämolyse kann zu hohen Ergebnissen und ein Ikterus zu niedrigen Ergebnissen führen. 6. Der Plasma-Harnstoffgehalt (klar) steht in engem Zusammenhang mit dem Proteingehalt des Lebensmittels. Bei proteinreichen Diäten kann die Menge an Harnstoff im Plasma (klar) signifikant erhöht werden, während bei proteinarmen Diäten der Gehalt signifikant verringert wird. Methode der Enzymkopplungsrate: Das Reagenzprobenverhältnis betrug 70: 1, 37 ° C, 340 nm, die Verzögerungszeit betrug 30 s und die Ablesezeit betrug 30 s. Die spezifischen Analysebedingungen können vorzugsweise jedes Mal gemäß den Spezifikationen des Kits und des Instruments bestimmt werden. Hinweis: 1. Das häufigste Problem bei dieser Methode ist das Versagen des Reagens oder die Kontamination des Reaktionssystems. Die instabilsten Reagenzien sind NADH und Glutamatdehydrogenase. Bei der Analyse sollten folgende Aspekte beachtet werden: Wenn Plasma verwendet wird, können keine fluorchemischen Verbindungen oder NH4 + -Antikoagulanzien verwendet werden, da erstere die Urease-Aktivität hemmen und letztere an der Reaktion teilnehmen können. 2. Die Extinktion des Reagenzienblindwerts sollte größer als 1,2 A sein, da sonst das NADH oxidiert wird. Für dieselben Reagenzien und Instrumente sollte der F-Wert unter der Bedingung relativ konstant sein, dass die Analysebedingungen konstant sind, da sonst das Reagenz ungültig wird. 3. Das rekonstituierte Reagenz nicht vibrieren, um eine Deaktivierung des Enzyms zu vermeiden. Das Reagenz muss ohne Ammoniak rekonstituiert werden. Der Reagenzienbecher, der Probenbecher und der Reaktionsbecher sollten frei von Ammoniak, sauber und frei von Säure- und Alkaliverunreinigungen sein und jedes Mal kalibriert und mit Qualitätskontrollserum getestet werden. Nicht für die Menge geeignet Generell keine Tabus. Nebenwirkungen und Risiken Generell keine Tabus.

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